流式细胞术（Flow CytoMetry，FCM）是一种生物学技术，用于对悬浮于流体中的微小颗粒进行计数和分选。这种技术可以用来对流过光学或电子检测器的一个个细胞进行连续的多种参数分析。 流式细胞术是对悬液中的单细胞或其他生物粒子,通过检测标记的荧光信号，实现高速、逐一的细胞定量分析和分选的技术。

FCM是利用流式细胞仪对处在快速直线流动状态中的单列细胞或生物颗粒进行逐个、多参数、快速的定性、定量分析或分析技术。然而，在FCM的实际应用过程中，要想得到高质量的流式数据却并非易事。现就FCM实验中的常见问题进行分析，希望能帮助相关实验人员提高实验成功率。

1. 怎么选择合适的对照？
   1）同型对照：使用同型抗体做平行实验，主要目的是消除抗体与样本的非特异性结合。
   2）阴性细胞对照：使用已知的不表达目标抗原的细胞做平行实验，主要目的是消除抗体的非特异性结合。
   3）二抗对照：第二抗体多为荧光标记的多抗，非特异性结合一般较高，可能造成基础荧光值偏高，设立二抗对照平行实验的主要目的是消除二抗的非特异性荧光着色。
   4）阳性对照：一般会使用已知的高表达目标抗原的细胞做平行实验，主要目的是排除实验中实验方法、试剂、操作等实验的影响因素。
   5）空白对照：不进行任何标记的细胞，主要目的是用于测定基础荧光信号表达值。

2. 收集的细胞通过流式仪检测时，一般多少的细胞量合适？
   进行流式检测时，至少需要记录5000个活细胞，一般调整细胞密度至1*106/100ul进行流式检测。

3. FCM检测过程中如何设门（gating）？
   一般根据散射光进行设门，即我们通常所说的前散（forward scatter, FSC）和侧散（side scatter, SSC）来设门。FSC的大小与细胞的直径成正相关，不同的细胞，细胞越大，其FSC越大；反之越小。SSC的大小与细胞内颗粒结构的质量成正相关，不同的细胞，细胞内颗粒结构越复杂，质量越大，其SSC越大；反之越小。

4. FCM检测过程中如何调节补偿？
   在FCM检测过程中，如果存在多色，则必须进行荧光补偿调节。调节补偿首先要知道双阴性细胞的情况，其次，必须要用单阳和双阴性细胞。只有在有阴性细胞作为参照的情况下，才能既不会过多又不会过少地调节补偿。

5. FCM检测时，每次实验的细胞数一定要相同吗？
   FCM检测时，若不进行细胞计数而凭感觉随意进行实验会直接影响实验结果。当细胞量多而抗体量不变或细胞量不变而抗体量减少，那么荧光抗体平均分布到每个阳性细胞上的量就会相对减少。由此可见，不同的细胞量会影响最终的实验结果。因此，在准备样本时，必须进行细胞计数，使每个分组及每次实验的细胞数保持一致。

6. FCM检测时，如果存在多色分析，应该如何进行配色呢？
   在FCM检测过程中，如果存在多色分析，虽然可以通过荧光补偿来消除荧光光谱重叠的影响。但调节补偿过大在一定程度上仍然会影响测值的准确性，因此，我们一般建议尽量选择荧光光谱重叠少的荧光抗体组合。